分析方法覆盖三个层面。化学层面:TCOD/SCOD 用 Merck 试剂盒,NH₄-N、NOx-N、NO₂-N、PO₄-P 用流动注射分析,VFA 用气相色谱–氢火焰检测器(DB-FFAP 极性柱,样品过 0.45 µm 膜并加 10% 体积 1 M 甲酸保存),痕量元素用 ICP-OES,TKN 与 TP 经硫酸/硫酸钾/硫酸铜催化消解后测定,红外辐照强度用 StellarNet BLUE-Wave 微型光谱仪在 0/1/2/3/4 L 口三平行测定。物理层面:Imhoff 锥沉降与 SVI₃₀ 按 APHA 标准法,单颗粒沉降速率按 Batstone & Keller (2001),粒径用 Mastersizer 2000 激光衍射三平行测定(上限 2000 µm,并优化叶轮/泵转速以减少剪切),同时在光台上拍照。生化与结构层面:EPS 与 ALE 按 Felz et al. (2016) 的 80 ℃ 碳酸钠提取 + 3500 Da 截留膜透析 24 h + 1 M 盐酸沉淀(终点 pH 2.2±0.05)三平行测定;生物量蛋白由 TKN 换算(Eding et al., 2006),胞外蛋白用 BCA 比色法(14 800 g 离心提取,562 nm 读数,三平行);形态用扫描电镜(SEM,样品经戊二醛固定、乙醇梯度脱水、临界点干燥、镀金);空间分布用荧光原位杂交(FISH,25% 甲酰胺严谨度,冷冻切片 10–20 nm,激光共聚焦成像);群落用 16S rRNA 扩增子测序(926F/1392wR 引物,Illumina MiSeq,DADA2 去噪后归并为 27 个目级类群,只保留 >1% 的主要功能群做 PCA)。
FISH 探针Chro-1137(Chromatiales)、PARA739(Rhodobacterales)、EUB338mix(细菌域)、ALF1b、BET42a、ARC915(古菌)
COD 衡算按日进水流量×COD 质量浓度累积,缺口用线性插值,误差按 Batstone (2013) 解析传递,双尾 t 检验取 95% 置信区间
SRT 计算按每周排出(冲出 + 取样)的生物量占存量的比例反算
主要结果(原文 Fig. 1–9 逐图解读)
Fig. 1 Schematic of an upflow photobioreactor.
图示信息工艺流程示意图。左侧标注 IR Lamps,三个红外灯符号沿柱高等距分布;中间是竖直窄柱体(光生物反应器),底部有进水管与阀门、内部有布流结构;右侧从下到上依次标注 1 L / 2 L / 3 L 取样口、4 L 液体回流口、5 L 出水取样口,最上方为溢流管。4 L 回流口经上升流泵(Up-flow pump)与阀门回到柱底形成再循环回路;5 L 出水线经出水泵排出,另有支路通往 Imhoff 锥做沉降测定。
论文结果这张图定义了本文唯一的操控变量:上升流速完全由 4 L→0.5 L 的外部再循环泵设定,而不是靠产气或曝气。柱体内径 11 cm、工作体积 5 L,红外光从侧面单向入射,柱内侧不同高度设多个取样口,使得沿柱的生物量存量与光强分布都能分层测量。
Fig. 2 (A) Aggregated PPB biomass in the HRPBR (day 25), (B) a close-up of the biomass in the Imhoff cone (day 25), (C) a light table image of granules (day 185), (D) granular biomass in 250 mL glass flask (day 235).
图示信息四联实物照片。(A) 第 25 天 HRPBR 柱内实景:上部为橙红色浑浊液相,下部约四成为界面清晰的暗红棕色颗粒床,柱壁可见 2 L 标记与取样口配件。(B) 同日 Imhoff 锥近景:上层为半透明粉红液并悬浮红色絮片,下三分之一为致密粗粒的暗紫棕色沉降污泥,沉降界面清晰。(C) 第 185 天光台俯拍培养皿:数百颗离散的深棕/近黑色颗粒散布,粒径从亚毫米到数毫米,皿下钢尺刻度 11–19 cm 提供比例。(D) 第 235 天 250 mL 玻璃瓶内微距:近黑色颗粒与粉橙色生物量碎片混杂,可见气泡与半透明絮状团块。
论文结果照片记录了成粒的时间序列证据:两台反应器一开始都立即形成絮状生物量;HRPBR 在 50 d 内先出现被绒毛状生物量包裹的小而清晰的核(以亮红色区别于普通聚集体);80–90 d 内两台反应器都形成边界清晰的大型致密聚集体;成熟颗粒呈暗红/橙色。第 185 天光台图与第 235 天瓶内图显示颗粒已经离散、可流动,光台下最大可达 2–3 mm。
Fig. 3 (A) Sludge loading rate (SLR) (kgCOD kgVSS⁻¹ d⁻¹) and (B) total suspended solids (TSS) (mg L⁻¹) of the LRPBR (red diamond) and the HRPBR (green square) over time.
图示信息上下两张散点时间序列。(A) 纵轴污泥负荷 SLR(kg COD·kg VSS⁻¹·d⁻¹)0–1,横轴时间 0–235 d;红菱形为 LRPBR、绿方块为 HRPBR。两条曲线在 0 d 从同一起点约 0.12–0.15 出发后分道:红色迅速升到 0.45–0.55 并在 65–70 d 附近冲到极大值,随后回落并在 0.4–0.65 区间波动,末期降至 0.27–0.45;绿色则先在 35–45 d 降到最低约 0.18,再缓慢爬到 95–105 d 的 0.45–0.50,此后衰减到 0.15–0.25 的平台。(B) 纵轴 TSS 0–6000 mg/L。两者均从约 1650–2200 出发,红色在 15–75 d 间跌到 400–700 的低谷后回升,末期达 3200–3300;绿色从 15 d 的约 800 持续上升,140 d 后陡增,峰值约 5700,末期约 5350,全程基本高于红色且 140 d 后差距显著拉大。
论文结果启动时施加了较低的污泥负荷 0.12 kg COD·kg VSS⁻¹·d⁻¹,与厌氧/好氧颗粒污泥反应器启动的常用值一致。经过初期细微生物量的洗出,两台反应器的污泥存量以不同速率增长,SLR 随之分化:LRPBR 为 0.4–0.7、HRPBR 为 0.2–0.4 kg COD·kg VSS⁻¹·d⁻¹。高上升流/低 SLR 的 HRPBR 更利于生物量积累(终点 TSS 6000 mg/L,LRPBR 为 3000 mg/L)。两台反应器 OLR 都提升到 0.7 kg COD·m⁻³·d⁻¹,进水 SCOD/乙酸消耗 60%–80%,与其他 PPB 悬浮或生物膜系统处理废水时报道的 50%–95% SCOD 去除相当。生物量产率为 0.70–1.0 g COD_biomass/g COD_removed;按 235 d 累积颗粒态 COD 衡算,LRPBR 产率 0.49±0.03 g COD_biomass/g COD_in(衡算闭合 80±4%),HRPBR 为 0.46±0.04(闭合 85±7%);悬浮洗出生物量占进水 COD 的比例分别为 0.43 与 0.34 g COD_particulate/g COD_in。
Fig. 4 SVI₃₀ of LRPBR granules (red diamond) and HRPBR granules (green square) over time. Measured settling velocities for different time points (136 and 220 d) also shown (n = 10–16).
图示信息单张散点图,纵轴 SVI(mL/g)0–60、刻度间隔 5,横轴时间 0–225 d。绿方块(HRPBR)与红菱形(LRPBR)均从 0 d 的约 52 起步。红色持续且陡峭下降:5–35 d 从约 48 降到 31,60–90 d 落在 18–26,100–140 d 进入 10–15,约 218 d 时低至约 7;绿色在前 100 d 一直在 34–45 区间散布(含一个约 25 的离群点),下降速率虽一度更快但极不稳定,随运行调整反复波动。图中另标注了 136 d 与 220 d 两个时间点实测的单颗粒沉降速率(n=10–16)。
论文结果SVI 初始约 50 mL/g(源于大量生物膜碎片),已优于普通絮体。两条轨迹差异明显:HRPBR 下降更快但不稳定,随操作变更剧烈波动;LRPBR 在较高的 SLR(0.5 kg COD·kg VSS⁻¹·d⁻¹)下持续下行至低于 15 mL/g,并在此后 125 d 稳定维持在 5–15 mL/g。沉降结构的均一性可用 SVI₃₀/SVI₅ 判读:LRPBR 前 75 d 为 0.70±0.07,75 d 之后升至 0.97±0.20,即 SVI₃₀≈SVI₅,说明污泥在 5 min 内基本沉完;HRPBR 全程维持 0.67±0.05,未达到这种均一状态。前 25 d 两系统的 SVI₃₀ 每 1.2–1.6 d 下降 1 mL,随后放缓到每 3 d 下降 1 mL,由此估算成粒时间常数约 50 d。颗粒平均沉降速率(n>7)始终大于 30 m/h,单颗粒范围 20–200 m/h,200 d 后出现大量 >100 m/h 的极快沉降颗粒,尤以 LRPBR 为多。结论章给出的对照值是 LRPBR SVI₃₀ 约 10 mL/g、沉降速率 115 m/h;HRPBR SVI₃₀ 约 23 mL/g、沉降速率 80 m/h。生物量 VSS/TSS 比在两系统均由 0.9 降至 0.6。
Fig. 6 Bar plot of EPS contents of the LRPBR (red) and the HRPBR (green) granular biomass and ALE contents of LRPBR (red, hatched) and HRPBR (green, hatched) granular biomass with time. Note: HRPBR ALE at 233 d data was not included due to equipment failure.
图示信息分组柱状图,横轴为采样时间 25、55、90、160、200、220、233 d,纵轴为 EPS 与 ALE 产量(mg VS/g VS_granule)0–400。每个时间点最多四根柱:实心红(LRPBR 的 EPS)、实心绿(HRPBR 的 EPS)、斜纹红(LRPBR 的 ALE)、斜纹绿(HRPBR 的 ALE),均带误差棒。实心柱整体随时间上升,红色在 233 d 达到全图最高;斜纹柱数值显著低于实心柱,同样随时间抬升,其中 HRPBR 的 ALE 序列波动最大、误差棒最宽,233 d 数据因设备故障缺失。
论文结果两台反应器的颗粒 EPS 含量随时间显著上升(LRPBR p=0.01,HRPBR p=0.03)。LRPBR 在 233 d 达到最高 360 mg EPS/g VS,HRPBR 在 200 d 达到最高 300 mg EPS/g VS,两者差异具有统计显著性(p=0.002)。90 d 之后,LRPBR 的 ALE 占 EPS 的平均比例为 50%,HRPBR 为 33%。25 d 时的 EPS 值与活性污泥絮体相当(约 150 mg/g VS),之后升高到与其他颗粒污泥可比的水平(约 300–350 mg EPS/g VS 与 150–200 mg ALE/g VS)。90 d 后 EPS 与 ALE 相对 25 d、55 d 的明显上升,与目视观察到的“50 d 出现小核、80–90 d 形成边界清晰聚集体”相吻合。
Fig. 7 Low upflow (left) and high upflow (right) granules. Low magnification granule external surface (A and B), 2.00k magnification external surface (C and D) and 2.00k magnification internal surface (E and F) as captured by SEM.
研究意义“外层致密、内部仍有活菌、无惰性核”是这批颗粒最反常也最有利的特征。作为对比,好氧(如 Nereda®)与厌氧颗粒往往有惰性核与执行特定过程的分层菌区。从饲料角度看,全断面都是活菌意味着不同粒径的颗粒可以有相近的化学与营养特性,产品一致性有保障,不必按粒径分级销售。从工艺角度看,内部孔隙率低(LRPBR)说明低上升流下的颗粒更致密,这与它更低的 SVI 和更快的沉降速率是同一现象的两面。
Fig. 8 FISH confocal scanning microscopy of LRPBR (A, C) and HRPBR (B, D) granule cross-sections at 500 µm. 200× (A, B) using red CHRO1137-Cy3 (Chromatiales), blue PARA739-Cy5 (Rhodobacterales), green EUBMIX-FITC (most Bacteria); size bar 100 µm. 630× of granule edge (C, D); size bar 10 µm.
Fig. 9 PCA plot of the microbial communities, showing inoculum (X) and trajectory along time (increasing symbol size) for high upflow (green square) and low upflow (red diamond). Pie charts show relative proportion of major functional groups. Arrows show trajectory for the two systems.