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气体态 VFA 膜接触器串联厌氧光生物反应器连续产单细胞蛋白 | PNSB 产蛋白工艺 | 彭博士工具屋

用中空纤维膜接触器把发酵液中的挥发性脂肪酸以气态送入厌氧光生物反应器,避免发酵液与菌体直接接触。160 天连续运行下 VFA 通量达 8.86 gCOD·m⁻²·h⁻¹、OLR 3.9 gCOD·L⁻¹·d⁻¹,生物量产率 0.36 kgXPB·m⁻³·d⁻¹,粗蛋白 62%,氨基酸谱满足罗非鱼与奇努克鲑鱼需求。

紫色非硫细菌单细胞蛋白膜接触器挥发性脂肪酸连续培养水产饲料
💡 核心结论:把发酵液中的 VFA 以气态经中空纤维膜接触器送入厌氧光生物反应器,可在 160 天连续运行下稳定产出粗蛋白 62% 的 PNSB 生物量,生物量产率 0.36 kgXPB·m⁻³·d⁻¹、蛋白产率约 0.23 kgCP·m⁻³·d⁻¹。
📑 目录

文献信息

英文题名
Novel continuous production of single-cell proteins from purple non-sulfur bacteria using gaseous volatile fatty acids by closed-loop membrane contactor system
作者
Riccardo Lo Coco, Marco Pezzuto, Aleksandra Jelic, Stefano Cazzaniga, Nicola Frison
期刊 / 年份
Bioresource Technology 2026
DOI
10.1016/j.biortech.2025.133413
卷期 / 页码
440: 133413
单位
意大利维罗纳大学生物技术系
一句话概括:用闭路膜接触器把 VFA 从发酵液转到气相再鼓入厌氧光生物反应器,在 160 天里分四个阶段扫描 OLR,证明气相供碳既避免菌体污染又显著提高生物量与蛋白品质,并给出与养殖需求匹配的氨基酸化学评分。

一图不看也要知道的几件事

  • 系统连续运行 160 天,分 P1(11–23 d)、P2(28–43 d)、P3(44–63 d)、P4.1(64–76 d)与 P4.2(78–160 d)。
  • 合成 VFA 进料:70% 乙酸、10% 丙酸、20% 丁酸,浓度 13600 ± 1600 mgCOD·L⁻¹,pH 3.0 ± 0.1。
  • 优化后 MC 条件:进料温度 32 ± 1 ℃、单次接触时间 1.92 min、剥离时间 4 h,VFA 质量通量 8.86 gCOD·m⁻²·h⁻¹。
  • P4.1 温度升至 32 ℃时 OLR 一度达 5.8 ± 0.6 gCOD·L⁻¹·d⁻¹(总通量 8.81 ± 2.17 gCOD·m⁻²·h⁻¹),第 66 天生物量峰值 2.06 gXPB·L⁻¹,但因 pH 降至 6.07 ± 0.21 与光衰减回落,故回调至 3.9 ± 0.8 gCOD·L⁻¹·d⁻¹。
  • P4.2 稳态活性生物量 1.78 ± 0.05 gXPB·L⁻¹,生物量产率 0.36 ± 0.01 gXPB·L⁻¹·d⁻¹(0.36 kgXPB·m⁻³·d⁻¹)。
  • 粗蛋白含量由 P2 的 515 g·kgMLVSS⁻¹ 提升到 P4 的 624 g·kgMLVSS⁻¹(58%→60%→62%);总氨基酸 469→490→546 g·kgMLVSS⁻¹,AA/CP 由 80% 升至 83%。
  • 共产物:P2–P4 细菌叶绿素 10.2→8.39→12.1 gBChls·kgMLVSS⁻¹,类胡萝卜素 1.08→2.29→2.79 gCrts·kgMLVSS⁻¹,PHA 120→90→40 g·kgMLVSS⁻¹;SCP 品质参数 65%→64%→68%。
  • P4 稳态 COD 去除率 87%、氮去除率 91%、磷去除率 80%;随菌体进入的氮约 91% 被同化。
  • 关键必需氨基酸 L-Lysine 53.6、L-Leucine 49.9、L-Isoleucine 29.1 g·kg⁻¹,化学评分 >100%;L-Valine、L-Methionine、L-Phenylalanine 略低于 100%。

研究背景与要解决的问题

欧盟蛋白饲料高度依赖进口,2023 年蛋白饲料市场规模约 149 亿欧元,预计 2032 年增至 285 亿欧元;豆粕、谷物与鱼粉供应受地缘与气候因素冲击,需要新的可持续蛋白来源。

单细胞蛋白(SCP)可由酵母、真菌、微藻和细菌利用多种碳源生产;紫色非硫细菌(PNSB)能在厌氧条件下高效利用废水中的 VFA,菌体蛋白含量通常 50–60%,并共生类胡萝卜素、PHA 等增值物,能量需求(450 vs 4000 MJ/kg N-protein)远低于常规过程。

直接用发酵液培养存在菌体被复杂菌群稀释与病原体污染的风险,限制其作为水产饲料蛋白;膜接触器可分离并纯化 VFA,同时充当病原屏障。

本研究提出把 VFA 以气态(真空驱动)经中空纤维膜接触器供入厌氧光生物反应器的新构型,目标是在避免发酵液与菌体接触的前提下,实现连续、稳定的 SCP 生产并评估其可放大性。

概念与技术边界

膜接触器(MC)
中空纤维微孔膜组件,液体走管腔、气体走壳程,靠跨膜分压差让 VFA 从液相进入气相,不发生两相直接混合。
AnPBR
厌氧光生物反应器,此处按序批式(SBR)运行,以 NIR 光照驱动 PNSB 光异养生长,碳源只来自膜接触器送来的气态 VFA。
OLR
有机负荷率,单位反应器体积每天接受的有机底物量(gCOD·L⁻¹·d⁻¹),本研究中由 MC 温度与接触时间决定。
tc,tot
总接触时间,进料液在剥离期内累计与膜接触的时间(单次循环接触时间 × 循环次数)。
SCP 品质参数
生物量中粗蛋白、色素與 PHA 等高价值组分之和占总挥发性固体的比例(gBioP·gMLVSS⁻¹)。
化学评分(CS)
某必需氨基酸在样品蛋白中的占比与参考蛋白(如鱼粉、罗非鱼、鲑鱼)中同种氨基酸占比之比,衡量蛋白是否满足动物需求。

体系与方法

环节做法与参数
进料配制每天现配 2 L 合成 VFA 混合液(70% 乙酸、10% 丙酸、20% 丁酸),13600 ± 1600 mgCOD·L⁻¹,pH 3.0 ± 0.1,模拟 OFMSW 发酵液的 VFA 组成。
膜接触器3M Liqui-Cel MM-1×5.5 聚丙烯中空纤维膜,内表面积 0.22 m²,孔径 0.03–0.2 µm、孔隙率 30–40% 以拦截细菌;进料以 225 mL·min⁻¹ 闭路循环,真空 100 mbar;运行温度按实验期为 20、25、32 ℃。
反应器3 L 圆柱 AnPBR(工作体积 2 L,水高 16.5 cm),连续搅拌 230 rpm;NIR LED 810–870 nm、31.7 W·m⁻²,光面积/体积比 40 m²·m⁻³;温度 30 ± 2 ℃,pH 维持 7.5 ± 0.2;SRT=HRT=5 d,每天排液并补营养液 20%。
接种接种 Rhodopseudomonas palustris DSM 126 纯培养(0.75 ± 0.08 gVSS·L⁻¹),但反应器按开放混合培养运行。
运行与优化通过改变 MC 温度(20→25→32 ℃)与总接触时间(1.92/2.88 min)调控 OLR;预实验测试剥离时间 2、4、6、9 h。
分析COD/MLVSS 按标准法;VFA 用离子色谱;蛋白质用凯氏定氮×6.25;氨基酸离子色谱茚三酮衍生;PHA 用气相色谱(Braunegg 法);色素用丙酮提取+分光光度(350–900 nm);群落用 16S rRNA V4 扩增子测序。

主要结果(原文图表逐条解读)

Fig. 1 气体态 VFA 膜接触器—厌氧光生物反应器(MC-AnPBR)系统,(a) 工艺流程图,(b) 实验装置照片。
Fig. 1 气体态 VFA 膜接触器—厌氧光生物反应器(MC-AnPBR)系统,(a) 工艺流程图,(b) 实验装置照片。
图示信息:流程图展示进料罐、中空纤维膜接触器、真空泵与带 NIR 光照的 AnPBR 之间的物料与气体回路;照片为实际实验室装置。
论文结果:系统由 MC 与 AnPBR 两个单元组成:VFA 在真空(100 mbar,真空泵 0.7/0.85 m³·h⁻¹)驱动下经膜从液相转入气相,再经陶瓷扩散器鼓入 AnPBR;设计上避免菌体与发酵液直接接触。
研究意义:气相供碳构型是本研究的核心创新,用以同时实现 VFA 纯化、防污染与厌氧条件维持。
Table 1 MC 系统的实验期与运行条件(表格,无独立图片)。
图示信息:表格列出各实验期的真空度、进料流速、剥离时间、总接触时间、温度与应用 OLR 范围。
论文结果:真空恒为 100 mbar、流速 225 mL·min⁻¹;P1 为 20 ℃/1.92 min、OLR 0.7 ± 0.2;P2 为 20 ℃/2.88 min、OLR 1.3 ± 0.3;P3 为 25 ℃/2.88 min、OLR 1.9 ± 0.3;P4.1 为 32 ℃/2.88 min、OLR 5.8 ± 0.6;P4.2 为 32 ℃/1.92 min、OLR 3.9 ± 0.8 gCOD·L⁻¹·d⁻¹。
研究意义:温度与接触时间是调控 OLR 的两个主控参数,P4 因 pH 不稳定被拆分为 4.1 与 4.2 两个子期。
Fig. 2(a)(b) (a) 不同温度与总接触时间下乙酸、丙酸、丁酸的传递效率 η%;(b) 进料罐中 VFA 通量、ΔpH 与 Δ电导率随时间的变化。
Fig. 2(a)(b) (a) 不同温度与总接触时间下乙酸、丙酸、丁酸的传递效率 η%;(b) 进料罐中 VFA 通量、ΔpH 与 Δ电导率随时间的变化。
图示信息:(a) 以 P1–P4.2 分组的柱状图,同时叠加温度(三角)与接触时间(方块)标记;(b) 160 天时间序列,纵轴为 VFA 通量、ΔpH 与 Δ电导率。
论文结果:P2(20 ℃)η 为 HAc 11 ± 1%、HPr 7 ± 2%、HBu 7 ± 2%;P3(25 ℃)HAc 17 ± 2%、HPr 11 ± 3%,HBu 降至 3%;P4.1(32 ℃)η 升至 HAc 52 ± 5%、HPr 39 ± 3%、HBu 11 ± 3%;P4.2 总 VFA 通量 8.86 gCOD·m⁻²·h⁻¹(HAc 7.71、HPr 0.77、HBu 0.38)。
研究意义:温度升高显著促进乙酸与丙酸的跨膜传递;丁酸受分压平衡限制,延长接触时间不能持续提高其回收。
Fig. 2(c)(d) (c) OLR、活性生物量与反应器 pH 的时间变化;(d) 各期生物量产率、粗蛋白产率与粗蛋白占比。
Fig. 2(c)(d) (c) OLR、活性生物量与反应器 pH 的时间变化;(d) 各期生物量产率、粗蛋白产率与粗蛋白占比。
图示信息:(c) 160 天时间序列,纵轴分别为 OLR、活性生物量与反应器 pH;(d) 按 P2/P3/P4 分组的生物量产率柱、粗蛋白产率折线与粗蛋白占比散点。
论文结果:OLR 由 P2 的 1.3 ± 0.4 经 P3 的 1.9 ± 0.4 提升到 P4.2 的 3.9 ± 0.8 gCOD·L⁻¹·d⁻¹;活性生物量由 P2 的 0.78 ± 0.09 升至 1.06 ± 0.04,P4.2 稳定在 1.78 ± 0.05 gXPB·L⁻¹;生物量产率 0.16→0.21→0.36 gXPB·L⁻¹·d⁻¹;粗蛋白产率 0.06→0.12→0.23 kgCP·m⁻³·d⁻¹;粗蛋白占比 58%→60%→62%。
研究意义:OLR 与生物量/蛋白产率总体正相关;但 OLR 过高时 pH 下降与光衰减抑制生长,需回调 OLR 才能长期稳定。
Table 2 预实验中不同剥离时间与总接触时间下各酸的传递效率、通量与传递质量(表格,无独立图片)。
图示信息:表格按酸(HAc/HPr/HBu)×剥离时间(2/4/6/9 h)列出 η%、j(gCOD·m⁻²·h⁻¹)与质量传递量。
论文结果:剥离 2 h(tc,tot 0.96 min)时 HAc 传递可忽略;4 h(1.92 min)HAc η 7 ± 1%、j 2.4 ± 0.2、传递 2.1 ± 0.2 gCOD;6 h(2.88 min)HAc η 9 ± 1%、j 2.2 ± 0.2;9 h(4.32 min)HAc η 14 ± 3%、j 1.8 ± 0.2。丁酸通量随剥离时间延长反而下降(0.62→0.34→0.14 gCOD·m⁻²·h⁻¹)。
研究意义:4 h/1.92 min 被选为后续运行条件,在 HAc 回收与系统效率间取得平衡;丁酸/丙酸很快达到分压平衡而停止净传递。
Fig. 3 不同实验期 AnPBR 生物量中科水平类群的相对丰度(微生物群落结构)。
Fig. 3 不同实验期 AnPBR 生物量中科水平类群的相对丰度(微生物群落结构)。
图示信息:以启动、P1、P2、P3、P4.1、P4.2 为样本的双向堆叠柱状图,上/下半轴分别表示 PPB 与非 PPB 类群相对丰度。
论文结果:启动驯化第 7 天 Xanthobacteraceae(PNSB)占 80.4%,主属为 Rhodopseudomonas sp.;P1 因泄漏进氧 PNSB 降至 4.46%,Burkholderiaceae 27.51%、Moraxellaceae 25.2%、Weeksellaceae 16.95% 富集;P2 近中性 pH 下 PNSB 家族 >70%(其中 Xanthobacteraceae 69%、98.7% 为 Rhodopseudomonas sp.);P3 PNSB 64.9%(Xanthobacteraceae 75%、Rhodobacteraceae 20%);P4 酸性 pH 使 PNSB 较 P2 下降约 15%,Paludibacteraceae 升至 21%。
研究意义:厌氧与近中性 pH 是维持 PNSB 优势的关键;进氧或酸化会使好氧/耐酸杂菌显著上升。
Fig. 4 各实验期的生物量产率(gCOD·gCOD⁻¹),星号标注污染期的显著差异。
Fig. 4 各实验期的生物量产率(gCOD·gCOD⁻¹),星号标注污染期的显著差异。
图示信息:按 Period 1–4 分组的箱线图,纵轴为以 COD 计的观测生物量产率。
论文结果:P2 与 P3 观测产率约 0.32 ± 0.01 与 0.31 ± 0.02 gCOD·gCOD⁻¹,P4.2 为 0.36 gCODX·gCOD⁻¹;P1(污染期)中位数最高并被标为显著差异。
研究意义:表观产率偏低与非生物膜(附着生物膜可占 COD 摄取的 30–75%)未计入及 COD 产率本身较低有关。
Table 4 单细胞蛋白(SCP)表征与品质(表格,无独立图片)。
图示信息:表格列出 P2/P3/P4 的 MLVSS、粗蛋白、氨基酸、细菌叶绿素、类胡萝卜素、PHA 与 SCP 品质参数。
论文结果:MLVSS 0.59→1.09→1.87 kg·m⁻³;粗蛋白 515→541→624 g·kgMLVSS⁻¹;氨基酸 469→490→546 g·kgMLVSS⁻¹;细菌叶绿素 10.2→8.39→12.1;类胡萝卜素 1.08→2.29→2.79 g·kgMLVSS⁻¹;PHA 120→90→40 g·kgMLVSS⁻¹;SCP 品质 65%→64%→68%。
研究意义:P4 的粗蛋白处于 PNSB 常见范围(45–65%)高端;随 OLR 提高 PHA 累积下降,而蛋白与色素上升。
Table 3 MC-AnPBR 系统基于 P4 数据推导的碳、氮、磷质量平衡(表格,无独立图片)。
图示信息:表格分列进水(气态 VFA、营养液)、出水(上清可溶 COD、悬浮菌体、H₂)与去除率的 COD、TN、TP。
论文结果:进水合计 COD 6.16(气态 VFA 6.10 + 营养液 0.06)、TN 0.11、TP 0.20 g·d⁻¹;出水上清可溶 COD 0.8、TN 0.01、TP 0.04;悬浮菌体 1.86 gCOD·d⁻¹ 含 N 0.10、P 0.10;H₂ 0.39 gCOD·d⁻¹;去除率 COD 87%、N 91%、P 80%。
研究意义:碳主要转化为菌体与氢气;氮几乎全部进入蛋白(氮同化率约 91%),磷以多聚磷酸盐形式储存在菌体中。
Fig. 5 生产生物量中必需氨基酸的化学评分,与罗非鱼(O. niloticus)、O. mossambicus、奇努克鲑鱼及鱼粉的膳食需求比较。
Fig. 5 生产生物量中必需氨基酸的化学评分,与罗非鱼(O. niloticus)、O. mossambicus、奇努克鲑鱼及鱼粉的膳食需求比较。
图示信息:九种必需氨基酸水平的横向分组柱状图,横轴为化学评分(0–180),100 为达标参考线。
论文结果:L-Lysine(53.6 g·kg⁻¹)、L-Leucine(49.9)与 L-Isoleucine(29.1)化学评分 >100%;L-Valine、L-Methionine、L-Phenylalanine 略低于 100%。相较 Hülsen 等的悬浮培养 PNSB,L-Lys、L-Leu、L-Ile 分别高 48%、16%、14%;L-Leu 与 L-Thr 比 Chlorella sp. 高 82% 与 78%。
研究意义:氨基酸谱总体匹配罗非鱼与奇努克鲑鱼等养殖物种的需求;作为唯一饲料来源时需补充缬氨酸,并关注蛋氨酸与苯丙氨酸略不足。

机制小结

  • PNSB 在有光厌氧/微氧条件下以光异养代谢为主,VFA 经乙酰辅酶 A、乙醛酸循环(GAC)、TCA 与 EMP 路径进入细胞合成。
  • 膜接触器以跨膜分压差为驱动力,酸性 pH 下 VFA 以质子化形式存在、挥发性提高,从而更快转入气相。
  • 反应器内 pH 7.5 远高于 VFA 的 pKa,进入液相的 VFA 解离为阴离子并被 PNSB 摄取,同时引起 pH 酸化。
  • 低 ORP(P4 剥离期平均 −195 mV)推动 PNSB 以 PHA 作为电子汇来维持氧化还原稳态;碳源受限时 PHA 被消耗。
  • NIR(810–870 nm)光照选择性富集 PNSB,降低与其它光养生物的竞争;氧会抑制色素合成,故需维持厌氧。

工程与产业含义

  • 气相供碳把 VFA 提纯与生物转化解耦,可减少非生物降解 VSS 与惰性物质进入菌体,产物 VS/TS >95%。
  • P4.2 稳态条件(32 ℃、1.92 min、OLR 3.9 gCOD·L⁻¹·d⁻¹)可作为连续运行的参考工况;过高 OLR 会因酸化与光衰减失稳。
  • 共产物(色素约占 1%、PHA 4–12%)可提升生物量的营养与经济价值;类胡萝卜素含量(500–13000 mg·kg⁻¹ 干重)远高于水产饲料常规添加量(50–100 mg·kg⁻¹)。
  • 反应器运行 75 天稳态(生物量与 pH 波动 <5%)表明该构型具备长期可靠性与可放大性。
  • 氢气作为副产物产生 0.55 L·d⁻¹(比产氢 0.05 gCOD·gCOD⁻¹),可回收利用但产量有限。

适用与不适用场景

✅ 适用场景
  • 以酸相发酵液(OFMSW 等有机废物)为原料、需要将 VFA 与菌体隔离的 SCP 生产场景。
  • 水产饲料替代蛋白方向:菌体蛋白含量高且氨基酸谱匹配鱼类需求。
  • 需同时回收蛋白、色素与 PHA 的共产物型生物炼制。
  • 开放混合培养、非灭菌运行的中小规模中试与放大验证。
⚠️ 不适用 / 需谨慎
  • 菌体蛋白浓度仍然偏低(约 1.87 kg·m⁻³),直接用于高浓度蛋白制品需额外浓缩。
  • 含高盐或高离子强度真实发酵液会降低跨膜传质效率,本实验用低离子强度合成液。
  • 不能依赖单一原料波动过大的废水而不做 VFA 组分与温度调控。
  • 蛋氨酸、苯丙氨酸、缬氨酸含量略低,作为唯一蛋白源需营养补强。

局限与不确定性

作者未解决 / 需要读者注意的问题
  • 进料为合成 VFA 混合液,未验证真实发酵液与长期膜污染/润湿/降解行为。
  • 未计入附着生物膜,观测产率偏低,实际 COD 去向需更完整核算。
  • 膜系统在 160 天内的传质稳定性只在特定温度/接触时间组合下评估。
  • P1 的泄漏事故说明真空与厌氧边界条件对系统稳定性高度敏感。
  • 氢气等气体产量基于换算系数估算,未做能量平衡或全生命周期分析。

数据 · 代码 · 经费 · 利益冲突

基金支持:FSE REACT-EU 框架下绿色与创新主题博士奖学金(Azione IV.5,CUP B39J21025820001);意大利大学与研究部 PNRR 项目 PHARPLE(2022MHBMEH,CUP B53D23006260001)。作者声明无已知竞争性经济利益或个人关系。数据按请求提供(Data will be made available on request),补充材料见 https://doi.org/10.1016/j.biortech.2025.133413。

来源与链接

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