Mechanical Energy Drives the Growth and Carbon Fixation of Electroactive Microorganisms
机械能生物杂化压电效应微生物代谢固碳硝酸盐还原沼泽红假单胞菌钛酸钡
本文在专题中的位置:本专题绝大多数篇目研究的是“光”这一种能量输入——光合细菌靠光子驱动产蛋白。这篇论文提供了同一个模式菌株(Rhodopseudomonas palustris)在完全不同能量输入下的对照:不给光、不给有机电子供体,只给机械搅拌,靠压电材料把机械能转成电子能来支撑自养生长与固碳。它的价值在于说明 R. palustris 的电子获取通路远比“光合”宽,也为“能量输入方式如何决定产率上限”提供了一个极端参照点。
文献信息
英文题名Mechanical Energy Drives the Growth and Carbon Fixation of Electroactive Microorganisms
作者Ren G#, Ye J#, Liu L, Hu A, Nealson KH, Rensing C, Zhou S*
转录组把电子的去路说清了:氢化酶、纳米丝(纳米导线与鞭毛)、c 型细胞色素、F 型 ATP 合酶基因均显著上调,CBB 循环中 Form I(cbbLS,3.1 倍)与 Form II(cbbM,8.6 倍)RuBisCO 大幅上调,反硝化 nar/nir/nor/nos 操纵子分别上调 32–156、3–636、31、10–24 倍;而光合所必需的 RC–LH 复合体转录水平没有显著变化。
普适性验证充分:机械力可换成振动与超声,压电材料可换成天然电气石、SrTiO₃ 与石英(速率较慢),微生物可换成产甲烷菌 M. barkeri(CO₂→CH₄)、产乙酸菌 M. thermoacetica(CO₂→乙酸)、硫酸盐还原菌 D. desulfuricans 等;而非电活性的大肠杆菌与枯草芽孢杆菌无生物量增长也无硝酸盐还原。
模型体系的选择很讲究。紫色非硫细菌 Rhodopseudomonas palustris CGMCC 1.2180 作为模式电活性微生物,本身就是本专题的核心菌株;钛酸钡(BTO)作为模式压电陶瓷,是应用最广的压电材料之一,属于压电系数高、介电损耗低、化学与热稳定性极高的稳固介电材料。二者结合后,用机械能驱动 BTO 的压电换能,产生的胞外电子被连续输送给 R. palustris,用于胞内固碳并耦合硝酸盐(NO₃⁻)还原。
Fig. 1 Illustration of the R. palustris-BTO system. (a) Depiction of the R. palustris-BTO system, in which cells grow via the BPE process based on mechanical energy; (b) proposed principle of the BPE process in a system with R. palustris and BTO; (c) pathway diagram for sustainable carbon fixation coupled with NO3− reduction in the R. palustris-BTO system; CBB: Calvin–Benson–Bassham cycle.
转录组10 000 × g 离心 30 min 收样,TRIzol 提总 RNA,NEBNext Ultra II Directional 建库,减法杂交去除 rRNA,Illumina HiSeq/MiSeq 测序,比对 R. palustris CGMCC 1.2180 基因组(NZ_CP058907.1),归一化为 FPKM
统计所有实验至少三重复,采用配对双尾 t 检验
自组装的机理被归因于聚合物桥连:R. palustris 的 EPS 与 BTO 之间发生桥连,其中 EPS 内大量高分子量多糖起了关键作用,并借静电力、范德华力、氢键与化学反应等多种潜在相互作用促成。SEM、STEM 与能谱(EDS)成像显示细胞表面存在由 Ti 与 Ba 组成的小颗粒团簇,粒径 20–90 nm;高分辨 TEM 与 XRD 进一步确认了 BTO 身份——2.83 Å 的晶面间距与四方相 BTO 的(110)晶面吻合(JCPDS # 79-2264)。
Fig. 2 Characterization of the surface morphology and piezoelectric properties of R. palustris-BTO. (a) SEM image of R. palustris-BTO (the inset image shows bare R. palustris); (b) STEM image, high-angle annular dark field (HAADF) image and corresponding EDS maps of Ti and Ba; (c) P-E hysteresis curves and (d) piezoresponse hysteresis loops of R. palustris-BTO; (e) topography, amplitude, resonance frequency, and phase of R. palustris-BTO; (f) current intensity of R. palustris-BTO under a stirring on/stirring off cycle (30/30 min; the right-side images show the directions of current generation during piezoelectric transduction). Scale bars: 500 nm in (a) and the insert image, 500 nm in (b), and 200 nm in (e).
Fig. 3 Piezoelectric catalytic performance of R. palustris-BTO. (a) Illustration of the piezoelectric catalytic process by R. palustris-BTO with mechanical stirring; (b) variation in the cell biomass of R. palustris-BTO-stir and the control over five successive 12 d cycles (i.e., a total of 60 d); (c) CLSM images of R. palustris-BTO (red and green indicate dead and live cells, respectively); (d) ToF-SIMS imaging of R. palustris-BTO; (e) NO3− reduction by R. palustris-BTO and elimination controls; (f) typical time course of NO3− reduction with R. palustris-BTO over five successive 12 d cycles; (g) product selectivity after 12 d of agitation of R. palustris-BTO.
图示信息七联结果图。(a) 反应器示意:密封血清瓶置于磁力搅拌器上,瓶内蓝色液体含红色菌体与搅拌子,放大视图为受两个青色箭头压缩的 BTO 晶格及成对的 e⁻ 与 h⁺,反应标注为 CO₂、NO₃⁻ 输入,Biomass、NO₂、N₂O 输出。(b) 生物量变化折线图,横轴 Time (d) 0–60、纵轴 Biomass variation (mg-protein·L⁻¹) 0 至 20 以上;红色方点的 R. palustris-BTO 搅拌组近线性单调上升,从约 0 升至约 22,误差棒随时间增大;蓝色圆点的 R. palustris-BTO 组与绿色三角的 R. palustris 搅拌组全程平稳在约 1.5–3。(c) 共聚焦活/死染色图 2×2 阵列,红为死菌、绿为活菌:上排(搅拌组)0 d 与 60 d 均以绿色为主,下排(未搅拌组)0 d 为绿、60 d 几乎全红;下方黄色渐变箭头标示 0 d → 60 d。(d) ToF-SIMS 的 ¹³C 同位素成像,彩虹色标下可见细胞轮廓与多处强富集区,左下黑框插图为对照(近乎全黑、无富集,红箭头标注),下方色标为 ¹³C atom percent (%) 0–100。(e) 硝酸盐衰减动力学,横轴 Time (d) 0–12、纵轴 NO₃⁻–N concentration (mmol·L⁻¹) 0–1.0:绿色菱形 BTO 搅拌组基本持平在约 0.92;灰色三角 R. palustris 搅拌组降至约 0.81;蓝色圆点 R. palustris-BTO 组降至约 0.71;红色方点的完整体系近线性陡降至约 0.02。(f) 五轮循环的锯齿形曲线,标注 1st 至 5th,每轮均自约 0.92 mmol/L 在约 12 天内降至约 0.02,各轮速率无衰减。(g) 氮产物分布柱状图,纵轴 Proportion of products (%) 0–100,横轴六类:NO₃⁻–N、NH₄⁺–N、NO₂⁻–N、N₂O–N、N₂–N、Others,其中 N₂O–N 柱最高。
论文结果为评估 R. palustris-BTO 的硝酸盐还原性能,作者系统性地逐一去除 R. palustris、BTO 与机械能。无 R. palustris 时几乎观测不到硝酸盐还原;无 BTO(R. palustris-stir)或无机械搅拌(R. palustris-BTO)时硝酸盐浓度只下降 15%,作者认为可能来自 R. palustris 培养过程残留的乙酸盐或生物合成中间物。只有 R. palustris-BTO 加机械搅拌才导致完全且持续的硝酸盐还原,说明这是各组分的协同作用。12 天搅拌后氮产物为 N₂O-N(68.2% ± 3.4%)、N₂-N(16.0% ± 1.9%)、NH₄⁺-N(4.8% ± 2.0%)与 NO₂⁻-N(0.7% ± 0.1%),搅动 3 天后氮的物料平衡已接近闭合。此外硝酸盐还原与磁能无关——机械搅拌与磁力搅拌样品的速率几乎相同;还原速率随 BTO 浓度与搅拌速率升高呈线性上升,作者归因于产生了更多可作还原当量的电子;加入抗坏血酸作牺牲试剂与 AQDS 作氧化还原介体可进一步改善还原,前者预期提高电子–空穴分离、后者提高电子传递效率。
电子进入的通路有三条被点名。其一是氢摄取——氢化酶等氢相关产物的编码基因转录水平显著变化(P < 0.001),说明氢抽提是 R. palustris 摄取胞外电子的重要途径。其二是纳米丝,包括纳米导线与鞭毛,在机械搅拌下高度活跃,这与既有发现一致:纳米丝的电学特性可增强与胞外电子受体/供体的电子交换。其三是广泛分布的 c 型细胞色素,例如周质细胞色素 c2,它把电子送入复合体 III 进行泛醌循环,并与复合体 I 一起把 NAD(P)⁺ 还原为 NAD(P)H 供能量代谢;由于其在机械搅拌下高表达,被认为是主要的电子摄取因子。这一判断还有一个热力学旁证:BTO 的还原电位低于直接还原 NAD⁺/NAD(P)⁺ 所需的电位,因此电子必须经细胞色素中转而非直接还原辅酶。
能量侧,编码 R. palustris 典型 F 型 ATP 酶(如 atp1、atp2)的基因同样高表达,与自养生长需要细胞投入能量这一事实相符。三种抑制剂实验也与转录组一致:加入抗霉素 A(靶向细胞色素 bc1)、CCCP(通过耗散质子动力势阻碍纳米丝形成)或 KCN(抑制氢化酶活性)中任一种,R. palustris-BTO 的硝酸盐还原都下降,表明这些活性位点都参与了 BPE 过程中的电子传递。
最有分量的一处阴性结果:RC–LH 复合体没有被动员
在光照与氧气充足条件下,反应中心(RC)–捕光(LH)复合体是 R. palustris 把光能高效转为电化学能的关键组件。而在机械搅拌条件下,RC–LH 复合体的转录水平没有显著变化。这直接说明机械能驱动下的代谢路径在电子产生、传递与利用三个环节上都不同于光照条件下的路径,也说明这不是“光合机器被机械信号顺带激活”的假象,而是一条独立通路。对本专题的意义是:同一株 R. palustris 在不同能量输入下会启用不同的电子获取系统,因此讨论它的产蛋白能力时必须绑定具体的培养模式。
Fig. 4 Transcriptomic analyses. (a) Analysis of the differential expression of key genes encoding functions correlated with electron and energy transfer in R. palustris-BTO with mechanical stirring versus R. palustris-BTO under stationary conditions. i: Cyts is c-type cytochromes; ii: NFs are protein nanowires and flagella; iii: H2ase is hydrogenase; iv: ATP synthases; v: Complex I is NADH dehydrogenase complex; vi: Complex III is c-type cytochrome oxidoreductase complex; vii: CBB cycle; viii: denitrification process; ix: RC–LH. (b) analysis of the differential expression of genes encoding enzymes involved in the CBB cycle. (c) differential expression analysis of denitrification operons: nar, nir, nor, and nos.
图示信息三联转录组图。(a) 以细胞结构为骨架的差异表达综合图,将九组功能标注在对应位置:i 为 c 型细胞色素(Cyts)、ii 为蛋白纳米导线与鞭毛(NFs)、iii 为氢化酶(H₂ase)、iv 为 ATP 合酶、v 为复合体 I(NADH 脱氢酶复合体)、vi 为复合体 III(c 型细胞色素氧化还原酶复合体)、vii 为 CBB 循环、viii 为反硝化过程、ix 为 RC–LH,并标出醌(Q)与醌醇(QH₂)的循环;比较对象为机械搅拌组相对静置组。(b) CBB 循环酶基因差异表达图,标出 1,3-BPG、FBP、F6P、X5P、Ru5P、R5P、E4P、S7P、DHAP、SDP 等中间物以及 cbbLS 与 cbbM(Form I 与 Form II RuBisCO)、pgk(磷酸甘油酸激酶)、gapdh(甘油醛-3-磷酸脱氢酶)、cbbA(果糖-1,6-二磷酸醛缩酶)、glpX(果糖-1,6-二磷酸酶 1 和 2)、tkl(转酮醇酶)、rpe(核酮糖-磷酸 3-差向异构酶)、prk(磷酸核酮糖激酶)等酶基因。(c) 反硝化操纵子 nar(硝酸盐还原酶)、nir(亚硝酸盐还原酶)、nor(一氧化氮还原酶)、nos(一氧化二氮还原酶)的差异表达分析。
微生物维度:电活性产甲烷菌 M. barkeri 与电活性产乙酸菌 M. thermoacetica 分别在 BTO 加机械搅拌下成功驱动 CO₂→CH₄ 与 CO₂→乙酸转化;电活性硫酸盐还原菌 D. desulfuricans 可经 BPE 驱动硫酸盐(SO₄²⁻)还原;电活性微生物 T. denitrificans、G. sulfurreducens、S. oneidensis 与 BTO 结合后分别有效驱动硝酸盐还原(6 天 95%)、甲基橙脱色(3 天 99%)与 Mn(IV) 还原(15 天 95%)。
阴性对照维度:以两种典型非电活性微生物 E. coli 与 B. subtilis 做生物压电催化实验,在持续机械搅拌下既无显著生物量增长也无硝酸盐还原——它们无法利用胞外电子。
作者据此得出结论:压电材料由机械能产生的电子能,只能被电活性微生物收获,作为驱动地球生物地球化学循环的普适微生物引擎。这个“只能”正是靠 E. coli 与 B. subtilis 的阴性结果撑起来的——如果非电活性菌也能生长,那机制解释就得推翻重来。
Fig. 5 Common microbial metabolisms based on the BPE process. Simplified tree of factors influencing microbial metabolism via the BPE process (top). BPE process based on different mechanical forces (mechanical stir, vibration, and ultrasound) in the R. palustris and BTO system, different piezoelectric materials (tourmaline, SrTiO3, and quartz) with R. palustris and mechanical stirring, and different electroactive microorganisms (M. barkeri, M. thermoacetica, and D. desulfuricans) with BTO and mechanical stirring (bottom).